免疫荧光实验指南

来源: 武汉伊莱瑞特生物科技股份有限公司   2018-7-11   访问量:431评论(0)

固定和透化
1. 在培养板中将已爬好细胞的盖玻片用1 × PBS浸洗3次,每次3 min。
2. 用4%的多聚甲醛固定爬片15 min,1 × PBS浸洗玻片3次,每次3 min。
3. 0.5% Triton X-100(1× PBS配制 )室温通透细胞15 min(细胞膜上表达的抗原省略此步骤), 1 × PBS浸洗玻片3次,每次3min。


封闭
4. 吸水纸吸干1 ×PBS,在玻片上滴加5%的正常血清(与二抗种属来源一致或相似),室温封闭1 h。
抗体孵育
5. 吸水纸吸掉封闭液,不洗,每张玻片滴加足够量的稀释好的一抗并放入湿盒,4 ℃孵育过夜。
6. 加荧光二抗: PBST 浸洗爬片3次,每次3 min,吸水纸吸干爬片上多余液体后滴加稀释好的荧光二抗,湿盒中37℃孵育1 h,PBST浸洗爬片3次,每次3 min。
注意:从加荧光二抗起,后面所有操作步骤都尽量在较暗处进行。

固定拍照
7. 复染核:滴加DAPI避光孵育5 min,对标本进行染核,PBST 5 min×4次洗去多余的DAPI。
8. 用吸水纸吸干爬片上的液体,用含抗荧光淬灭剂的封片液封片,在荧光显微镜下观察采集图像。



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