2. 产品特性 

基质 4%交联琼脂糖凝胶
配基 r-Protein A 形状 球形介质平均粒径 90 μm (45-165) 配基密度 6mg Protein A/ml wet gel 动态载量 45-50mg h-IgG/ml wet gel
最高流速（25℃） 450 cm/h 推荐流速 <150 cm/h 最高耐压 0.3 MPa (3 bar)
pH稳定性 3~10（长时间）；2~11（短时间） 
保存
4~8 oC（20%乙醇）

3. 使用方法
Protein A Bio-sep 4FF广泛用于各种抗体的分离纯化。层析操作通常包括装柱、平衡、进料、淋洗、洗脱、再生等步骤。
平衡：用5~10CV的平衡缓冲液（20 mM PB+0.15M NaCl，pH 7.0，添加适当浓度的NaCl抑制非特异性吸附）平衡层析柱，至流出液电导和pH不变（与平衡液一致）。
  进料：样品缓冲液应尽可能与平衡液一致。固体样品可用平衡液溶解配制；低浓度样品溶液可用平衡液透析；高浓度样品溶液可用平衡液稀释。为了避免堵塞层析柱，样品应经离心或微滤（0.45μm）处理。进料量根据介质的载量和料液中目标蛋白的含量计算。
  淋洗：上样完毕后继续用平衡缓冲液淋洗至基线。洗脱：用洗脱缓冲液（20 mM柠檬酸，pH 3.0-4.0；或0.1M甘氨酸，pH 3.0；或20 mM乙酸钠，pH 3.0-4.0；具体洗脱条件与抗体的结合强度和稳定性密切相关，效果不好时应进行洗脱缓冲液（种类和pH或添加剂）的优化）洗脱，收集流出液。洗脱后，应立刻用碱性缓冲液（如1M Tris/HCl, pH 9.0）将收集到的抗体溶液中和到抗体稳定的pH，避免抗体失活，维持抗体的生物活性。
  再生、原位清洗：介质使用数次（5-10次，具体次数与原料的种类和来源及实验要求有关）后，需要对介质进行再生、在位清洗。
（1）用0.1M的乙酸或0.1M的乙酸/20%乙醇淋洗柱子3-5CV，然后用缓冲液洗到中性即可重复使用；
（2）也可用0.05M NaOH+1M NaCl或6M盐酸胍淋洗柱子3-5CV，并用3~10 CV的纯水冲洗，然后用缓冲液洗到中性即可重复使用。
  其它注意事项：在装柱、使用和保存柱子的时候，要避免柱子流干，气泡进入。