免疫组化（IHC）实操技巧总结！
产品名称： 免疫组化（IHC）实操技巧总结！
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一提到免疫组化（IHC)实验，繁琐的操作步骤总是叫人头疼。其实IHC 实验并不难，但由于操作步骤较多，因此造成影响实验结果的因素较多，可谓是稍有疏忽就全盘皆输。但也不是没有办法解决，现在我将免疫组化操作中常见问题和解决方法汇总给大家，要做的来找我
No.1：切片染色深问题原因：一抗浓度过高是造成切片染色深常见的原因之一。
解决方法：是在每次使用新抗体前对其工作浓度进行测试，使每一抗体个体化，找到适合自己实验室的理想工作浓度，包括即用型的抗体也同样需要进行测试，不能只简单的按照说明书进行染色。
No.2：时间过长或温度过高影响实验结果
问题原因：忽视操作规程，没有严格控制时间，因遗忘而造成时间延长或温度过高。解决方法：实验人员应当严格执行操作规程，随身佩带报时表或报时钟，及时提醒。现在流行的二步法敏感性很高，要求一抗孵育的时间不是传统的 1 小时，而是 30 分钟，因此，要根据染色结果进行调整。
No.3：DAB显色不理想
问题原因：DAB 变质或显色时间太长。
解决方法：DAB 最好现用现配，如有沉渣，应进行过滤后再使用。当染色片太多或使用染色机，导致无法及时进行终止操作时，也应该尽量对新的，或使用频率不高的抗体，进行显色时的监控，避免显色时间过长。
配制好的 DAB 不应存放时间太长，因为在没有酶的情况下，过氧化氢也会游离出氧原子与 DAB 产生反应，从而降低 DAB 的效力；像未用完的 DAB 存放在冰箱里，需要的时候再取用的这种行为也是不可取的。DAB 的显色最好在显微镜下监控，待达到理想的染色程度时，应立即终止反应。
No.4：组织变干
问题原因：修复液溢出后未及时补充液体、染色切片太多、动作太慢、忘记滴液、滴液流失等都是造成组织变干的原因
解决方法：实验人员在操作过程中要做到仔细认真，并采用 DAKO 笔或 PAP Pen 在组织周围画圈，达到有效的避免液体流失，提高操作速度的效果。
No.5：切片背景着色
问题原因：切片在缓冲液或修复液中浸泡时间大于 24 小时，并切放置在室温下，特别是炎热的夏天，就会出现背景着色。有的实验室喜欢前一天将切片脱蜡至修复，第二天加抗体进行免疫组化染色，如果将装有切片和修复液的容器放在 4oC 冰箱过夜，对结果无明显影响。
解决方法：室温下不可存放时间太长，尤其是夏天。切片和修复液如需过夜，最好存放在 4oC 冰箱内。
No.6：切片不显色或者背景着色
问题原因：一抗变质、质量差的多克隆抗体，是导致切片不显色或者背景着色的主要原因。
解决方法：一定要注意一抗的有效期，用新买抗体时最好设立阳性对照和用使用过的抗体作比较。
No.7： 非特异性染色
问题原因：忘记血清封闭，在免疫组化中使用封闭血清，可以消除非特异性染色，提高目的蛋白的准确性和降低背景。
解决方法：封闭血清一般选择和二抗来源相同的，因此常用山羊血清。有时也会使用小牛血清、BSA、羊血清等，但不可与一抗来源相同。
No.8：操作过程中脱片
（1）黏附载玻片质量的问题。遇到这种情况建议尝试更换载玻片。
（2）组织切的不好。原因可能是切片机刀片较钝造成切片切的厚、不均匀，或者是切片机操作者手法不熟练等。
（3）组织本身的问题。比如癌症组织有坏死情况时，也容易造成脱片。
（4）烘烤结果不理想。可能是烘烤时间较短或温度不够等。
（5）操作时甩动幅度过猛。有脱片嫌疑的切片最好不甩或轻轻甩，可用卫生纸从边缘上慢慢吸水。
（6）修复过程出现问题，也容易出现脱片。比如在抗原修复时，高压时间过长，或者放进 100 度修复液时不够平稳。
（7）用 EDTA 修复比柠檬酸更容易脱片。
（8）使用 PBS 的时候尽量泡，不要冲。一旦见到有组织漂起来，操作时要更加谨慎。
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