RNAi全套产品服务上海吉凯基因化学技术有限公司

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技术服务信息

服务名称:RNAi全套产品服务
服务类别:分子生物学服务 - RNAi全套技术服务
价格:欢迎来电咨询
允许参观:不允许参与实验
所在区域:上海.上海
更新时间:2019/11/21 12:46:00
浏览人数:6926
诚信指数:804点
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使用范围:仅限科研使用,不能应用于临床
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上海吉凯基因化学技术有限公司
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上海市浦东新区张江高科技园区爱迪生路332号
邮编:
201203
电话:
18516626958/18621058196(企业用户)
传真:
021-51370635
联系人:
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所在区域:
上海·上海
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技术服务详细描述

RNAi全套产品服务


产品简介

当病毒基因、人工转入基因、转座子等外源性基因随机整合到宿主细胞基因组内,并利用宿主细胞进行转录时,宿主细胞常产生一些dsRNA。宿主细胞胞质中的核酸内切酶DicerdsRNA切割成多个具有特定长度和结构的小片段RNA(大约2123 bp),即siRNAsiRNA在细胞内RNA解旋酶的作用下解链成正义链和反义链,继之由反义siRNA再与体内一些酶(包括内切酶、外切酶、解旋酶等)结合形成RNA诱导的沉默复合物(RNA-induced silencing complexRISC)RISC与外源性基因表达的mRNA的同源区进行特异性结合,RISC具有核酸酶的功能,在结合部位切割mRNA,切割位点即是与siRNA中反义链互补结合的两端。被切割后的断裂mRNA随即降解,从而诱发宿主细胞针对这些mRNA的降解反应。在正常生物体内,RNA干扰起到抗病毒、抑制基因过量表达的作用。

 

 

产品组成

    定制RNAi产品

    Easy RNAi产品

    RNAi全套产品

  

 

产品比较

比较项目

化学合成siRNA

DNA载体shRNA

Lentiviral-shRNA

Adenoviral-shRNA

siRNA结构

双链RNA或发夹结构RNA

发夹结构RNA

发夹结构RNA

发夹结构RNA

RNA干扰持续时间

<72小时

<10

>30

10

适合的细胞系

转染效率大于70%的细胞

转染效率大于20%但是可以传代的细胞

几乎所有细胞

几乎所有细胞

单次制备费用

较高

重复使用费用

是否可自行扩增

不可以

可以

不可以

不可以

瞬时干扰实验

转染效率大于70%的细胞

转染效率大于20%但是可以传代的细胞

几乎所有细胞

几乎所有细胞

构建稳定表达siRNA的细胞株

不满足

满足,但有风险

满足,可以同时制备多种稳定表达细胞系

不满足

组织特异性干扰实验

不满足

满足

满足

满足

可诱导RNA干扰实验

不满足

满足

满足

满足

基因沉默后示踪实验

不满足

满足

满足

满足

裸鼠荷瘤实验

低重复性

低重复性

高重复性

高重复性

干细胞分化实验

不满足

不满足

满足

不满足

转基因knockdown实验

不满足

不满足

满足

不满足

 
应用领域

 


后续服务

   1. 多种同类功能试验对阳性基因的验证;

   2. 多细胞的验证;

   3. 过表达该基因的回复验证;

   4. 体内试验的验证(动物模型);

   5. 功能基因下游的筛选(敲减后细胞的芯片检测,Western Blot验证);

   6. 下游基因操作工具的制备;

   7. 病例样本的检测(组织芯片检测);

   8. 基因芯片检测;

   9. 蛋白质芯片检测;

 

参考文献

1. "Li M, Rossi JJ." Lentiviral Vector Delivery of siRNA and shRNA Encoding Genes into Cultured and Primary Hematopoietic Cells. Methods Mol Biol. 2005;309:261-72.  
 
2. "Fish RJ, Kruithof EK." Short-term cytotoxic effects and long-term instability of RNAi delivered using lentiviral vectors. BMC Mol Biol. 2004 Aug 3;5(1):9.  
 
3. "Nishitsuji H, Ikeda T, Miyoshi H, Ohashi T, Kannagi M, Masuda T." Expression of small hairpin RNA by lentivirus-based vector confers efficient and stable gene-suppression of HIV-1 on human cells including primary non-dividing cells. Microbes Infect. 2004 Jan;6(1):76-85.  
 
4. "An DS, Xie Y, Mao SH, Morizono K, Kung SK, Chen IS." Efficient lentiviral vectors for short hairpin RNA delivery into human cells. Hum Gene Ther. 2003 Aug 10;14(12):1207-12.  
 
5. "Scherr M, Battmer K, Ganser A, Eder M." Modulation of gene expression by lentiviral-mediated delivery of small interfering RNA. Cell Cycle. 2003 May-Jun;2(3):251-7.  
 
6. "Scherr M, Battmer K, Dallmann I, Ganser A, Eder M." Inhibition of GM-CSF receptor function by stable RNA interference in a NOD/SCID mouse hematopoietic stem cell transplantation model. Oligonucleotides. 2003;13(5):353-63.  
 
7. "Abbas-Terki T, Blanco-Bose W, Deglon N, Pralong W, Aebischer P." Lentiviral-mediated RNA interference. Hum Gene Ther. 2002 Dec 10;13(18):2197-201.  
 
8. Maurizio Federico, Lentivirus Gene Engineering Protocols (Methods in Molecular Biology) Humana Press; 1 edition, April 30, 2003
Tiscornia G, Singer O, Verma IM. Production and purification of lentiviral vectors.Nat Protoc. 2006;1(1):241-5.
 
9. Sena-Esteves M, Tebbets JC, Steffens S, Crombleholme T,Flake AW. Optimized large-scale production of high titer lentivirus vector pseudotypes. J Virol Methods 2004; 122:131
139.
 
10. Reiser J.Production and concentration of pseudotyped HIV-1-based gene transfer vectors.Gene Ther. 2000 Jun;7(11):910-3.


 


 

上海吉凯基因化学技术有限公司

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