目前公司现有人的、大鼠、小鼠的IPS细胞。

上海英为信生物科技有限公司，致力于慢病毒及其相关领域的研究，公司已经成功开

发出iPS慢病毒系统试剂盒。

1.       iPS慢病毒系统试剂盒：包含有人SOX-2,OCT-4,NANOG,C-MYC,KLF-4,LIN-28

六个因子的病毒，客户可以根据自己的需要选择其中的四个或6个病毒，目前该试剂

盒已经为很多客户所选择并得到良好的反馈，另外公司提供全套制备IPS的技术服务，

公司已经为客户成功制备了人的、大鼠和小鼠的诱导多能干细胞。

2.       另外客户可以单独购买干细胞培养基或滋养层细胞（MEF、HEF等）。

 
附iPS相关信息

诱导多能干细胞（iPS）技术的发展

多能干细胞是一种具有分化成三个胚层（内胚层，中胚层，外胚层）能力的细胞。

以前的观点认为分化的细胞是不能逆分化的，克隆羊多莉的出现改变了这种观点，

但是这种采用体细胞核转移（SCNT）技术制备多能干细胞的方法发展非常缓慢。

诱导多能干细胞（Induced Pluripotent Stem Cells,iPS）技术是近两年出现的新的

逆转体细胞命运，使其逆分化成为多能干细胞的技术。[1-4]

2006年日本京都大学Shinya Yamanaka教授將四种基因Oct4、Sox2、c-Myc、Klf4

通过逆转录病毒载体移植到老鼠已经分化的成纤维细胞，发现一段时间后能形成胚

胎干细胞样的克隆，通过筛选和功能鉴定，表明具有胚胎干细胞特征。但当时这种

细胞没有形成嵌合体老鼠，因此当时对他的实验结果有些争议，也没有引起足够的

重视，[5] 2007年，情况发生了改变，由thomson和日本科学家yamanaka分别在

07年11月份的science和cell上发表各自的研究结果，两个小组均采用逆转录病毒作

为载体将四个基因转入皮肤细胞，区别在于取材和基因的不同，日本人用的是一名妇

女的脸部皮肤基因包括Oct3/4、Sox2、c-Myc、Klf4， thomson采用的是新生儿的包

皮细胞基因包括Oct3/4、Sox2, Nanog和lin28，移入四个基因后细胞发生了再编程

（reprograming），形成多能干细胞，从而能发育成胚胎干细胞分化的脑，心脏，

血管等220多种组织。[6, 7]

到目前为止，已经出现了包括B淋巴等多种细胞来源的iPS细胞，在技术上已经比

较成熟。[8-11]

iPS技术对于干细胞研究的意义

利用病人的体细胞逆分化成干细胞具有重要意义，10年前Wilmut通过体细胞核转移

（SCNT）技术培育出世界上首例哺乳动物－多莉羊，震惊世界，多莉羊的出现使使

治疗性克隆的概念有了实质性的成果，在理论上可以将病人体细胞细胞核替换受精卵

母细胞的核，受精卵能继续发育并形成囊胚等，从而得到病人来源的胚胎干细胞。通

过定向诱导分化，使其发育成特定的治疗细胞，这一技术已经克隆出了各种动物，甚

至在07年用这种方法复制了灵长类动物猕猴的胚胎，但是这些胚胎移植到母猕猴子宫

内使其受孕，但并没有产下幼崽。[12] 到目前为止没有在人受精卵中成功的确证。体

细胞核移植技术形成胚胎和个体发育的低效使其应用受到很大限制，甚至多莉羊之父

Wilmut都开始质疑其在应用前景。2007年，Wilmut决定放弃这种技术，转向支持由

日本科学家Yamanaka建立的皮肤细胞诱导多能干细胞技术（iPS）。这一技术在形

成胚胎和个体发育的效率上也明显优于SCNT. Wilmut认为iPS技术效率更高，可操作

性更强。

在iPS出现之前，已经有三种类似的技术，体细胞核转移是其中一种，另外还有体细胞

与多能干细胞融合的方法及利用多能干细胞提取物诱导的方法，但这两种方法的技术不

成熟，效率很低，因此无法应用。iPS技术被认为是最有潜力的多能干细胞来源，这项

重大突破将可避开从人类胚胎中取得干细胞的伦理道德争议，同时也可以提供足量的用

于临床应用和基础研究的多能干细胞，科学界认为这项成就犹如莱特兄弟发明飞机。

Takahashi, K., et al., Induction of pluripotent stem cells from fibroblast cultures.

Nat Protoc, 2007. 2(12): p. 3081-9.

2.             Yamanaka, S., Strategies and new developments in the generation of patient

-specific pluripotent stem cells. Cell Stem Cell, 2007. 1(1): p. 39-49.

3.             Yamanaka, S., Induction of pluripotent stem cells from mouse fibroblasts by

four transcription factors. Cell Prolif, 2008. 41 Suppl 1: p. 51-6.

4.             Yamanaka, S. and K. Takahashi, [Induction of pluripotent stem cells from

mouse fibroblast cultures]. Tanpakushitsu Kakusan Koso, 2006. 51(15): p. 2346-51.

5.             Takahashi, K. and S. Yamanaka, Induction of pluripotent stem cells from

mouse embryonic and adult fibroblast cultures by defined factors. Cell, 2006. 126(4):

p. 663-76.

6.             Takahashi, K., et al., Induction of pluripotent stem cells from adult human

fibroblasts by defined factors. Cell, 2007. 131(5): p. 861-72.

7.             Yu, J., et al., Induced pluripotent stem cell lines derived from human somatic

cells. Science, 2007. 318(5858): p. 1917-20.

8.             Liao, J., et al., Enhanced efficiency of generating induced pluripotent stem

(iPS) cells from human somatic cells by a combination of six transcription factors.

Cell Res, 2008. 18(5): p. 600-3.

9.             Lowry, W.E., et al., Generation of human induced pluripotent stem cells from

dermal fibroblasts. Proc Natl Acad Sci U S A, 2008. 105(8): p. 2883-8.

10.          Nakagawa, M., et al., Generation of induced pluripotent stem cells without

Myc from mouse and human fibroblasts. Nat Biotechnol, 2008. 26(1): p. 101-6.

11.          Okita, K., T. Ichisaka, and S. Yamanaka, Generation of germline-competent

induced pluripotent stem cells. Nature, 2007. 448(7151): p. 313-7.

12.          Byrne, J.A., et al., Producing primate embryonic stem cells by somatic cell

nuclear transfer. Nature, 2007. 450(7169): p. 497-502.